Paso 6 (3)- Trayectorias de hospitalización y mortalidad con foco en condiciones vinculadas a trastornos de salud mental y consumo de sustancias posterior a un primer ingreso por alguno de estos trastornos, en usuarios/as jóvenes y adultos emergentes de población general y pertenecientes a pueblos originarios, 2018-2021, Chile
Análisis de sensibilidad para resolución mensual, utilizando aquella solución que obtuvo índices de calidad aceptables.
Autor/a
Andrés González Santa Cruz
Fecha de publicación
22 de ene, 2025
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Código
# remover objetos y memoria utilizadarm(list=ls());gc()
used (Mb) gc trigger (Mb) max used (Mb)
Ncells 598486 32.0 1366737 73 686445 36.7
Vcells 1125596 8.6 8388608 64 1876466 14.4
#elegir repositorioif(Sys.info()["sysname"]=="Windows"){options(repos =c(CRAN ="https://cran.dcc.uchile.cl/"))}options(install.packages.check.source ="yes") # Chequea la fuente de los paquetes#borrar caché#system("fc-cache -f -v")if(!require(pacman)){install.packages("pacman");require(pacman)}pacman::p_unlock(lib.loc =.libPaths()) #para no tener problemas reinstalando paquetesif(Sys.info()["sysname"]=="Windows"){if (getRversion() !="4.4.0") { stop("Requiere versión de R 4.4.0. Actual: ", getRversion()) }}if(!require(job)){install.packages("job");require(job)}if(!require(kableExtra)){install.packages("kableExtra");require(kableExtra)}if(!require(tidyverse)){install.packages("tidyverse");require(tidyverse)}if(!require(cluster)){install.packages("cluster"); require(cluster)}if(!require(WeightedCluster)){install.packages("WeightedCluster"); require(WeightedCluster)}if(!require(devtools)){install.packages("devtools"); require(devtools)}if(!require(TraMineR)){install.packages("TraMineR"); require(TraMineR)}if(!require(TraMineRextras)){install.packages("TraMineRextras"); require(TraMineRextras)}if(!require(NbClust)){install.packages("NbClust"); require(NbClust)}if(!require(haven)){install.packages("haven"); require(haven)}if(!require(ggseqplot)){install.packages("ggseqplot"); require(ggseqplot)}if(!require(grid)){install.packages("grid"); require(grid)}if(!require(gridExtra)){install.packages("gridExtra"); require(gridExtra)}if(!require(Tmisc)){install.packages("Tmisc"); require(Tmisc)}if(!require(factoextra)){install.packages("factoextra"); require(factoextra)}if(!require(stargazer)){install.packages("stargazer"); require(stargazer)}if(!require(gtsummary)){install.packages("gtsummary"); require(gtsummary)}if(!require(lmtest)){install.packages("lmtest"); require(lmtest)}if(!require(emmeans)){install.packages("emmeans"); require(emmeans)}if(!require(effsize)){install.packages("effsize"); require(effsize)}if(!require(fpp2)){install.packages("fpp2"); require(fpp2)}if(!require(purrr)){install.packages("purrr"); require(purrr)}if(!require(forecast)){install.packages("forecast"); require(forecast)}if(!require(magrittr)){install.packages("magrittr"); require(magrittr)}if(!require(foreach)){install.packages("foreach"); require(foreach)}if(!require(doParallel)){install.packages("doParallel"); require(doParallel)}if(!require(progressr)){install.packages("progressr"); require(progressr)}if(!require(chisq.posthoc.test)){devtools::install_github("ebbertd/chisq.posthoc.test")}if(!require(rstatix)){install.packages("rstatix"); require(rstatix)}if(!require(rio)){install.packages("rio"); require(rio)}if(!require(cowplot)){install.packages("cowplot"); require(cowplot)}if(!require(DiagrammeR)){install.packages("DiagrammeR"); require(DiagrammeR)}if(!require(DiagrammeRsvg)){install.packages("DiagrammeRsvg"); require(DiagrammeRsvg)}if(!require(rsvg)){install.packages("rsvg"); require(rsvg)}seq_mean_t_dos_grupos <-function(bd =NULL, group1, group2) {# Agrupar por ambas variables resultados <-by(bd, list(group1, group2), seqmeant)# Obtener todas las combinaciones posibles de los grupos combinaciones <-expand.grid(group1 =unique(group1), group2 =unique(group2), stringsAsFactors =FALSE)# Extraer los resultados y asociarlos con las combinaciones resultados_df <-do.call(rbind, lapply(seq_along(resultados), function(i) { group_name1 <-attr(resultados, "dimnames")[[1]][i] group_name2 <-attr(resultados, "dimnames")[[2]][i]data.frame(factor_inclusivo_1 = group_name1, factor_inclusivo_2 = group_name2, Mean = resultados[[i]]) }))# Unir los resultados con las combinaciones para rellenar los valores faltantes final_df <-merge(combinaciones, resultados_df, by.x =c("group1", "group2"), by.y =c("factor_inclusivo_1", "factor_inclusivo_2"), all.x =TRUE)return(final_df)}multinom_pivot_wider <-function(x) {# check inputs match expectatations# create tibble of results df <- tibble::tibble(outcome_level =unique(x$table_body$groupname_col)) df$tbl <- purrr::map( df$outcome_level,function(lvl) { gtsummary::modify_table_body( x, ~dplyr::filter(.x, .data$groupname_col %in% lvl) %>% dplyr::ungroup() %>% dplyr::select(-.data$groupname_col) ) } )tbl_merge(df$tbl, tab_spanner =paste0("**", df$outcome_level, "**"))}best_subset_multinom <-function(y, x.vars, data) {# y Nombre de la variable dependiente (cadena de texto)# x.vars Vector de nombres de predictores (caracter)# data Dataframe con los datos de entrenamiento# Cargar las librerías necesariasrequire(dplyr)require(purrr)require(tidyr)require(nnet)require(MASS)# Generar todas las combinaciones posibles de predictores predictors_list <-lapply(1:length(x.vars), function(i) {combn(x.vars, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE)# Inicializar una lista para almacenar los resultados results <-list()# Iterar sobre cada combinación de predictoresfor (i inseq_along(predictors_list)) { predictors <- predictors_list[[i]] formula <-as.formula(paste(y, "~", paste(predictors, collapse ="+")))# Ajustar el modelo multinomial model <-tryCatch( nnet::multinom(formula, data = data, trace =FALSE),error =function(e) NULL )# Si el modelo se ajustó correctamente, almacenar los resultadosif (!is.null(model)) {# Extraer el AIC del modelo aic <-AIC(model)# Almacenar la información en una lista results[[length(results) +1]] <-list(predictors = predictors,model = model,AIC = aic ) } }# Convertir la lista de resultados en un dataframe results_df <- results %>% purrr::map_df(function(res) {data.frame(predictors =paste(res$predictors, collapse ="+"),AIC = res$AIC,stringsAsFactors =FALSE ) })# Ordenar los modelos por AIC de menor a mayor results_df <- results_df %>%arrange(AIC)return(results_df)}best_subset_multinom_interactions <-function(y, x.vars, data) {# y Nombre de la variable dependiente (cadena de texto)# x.vars Vector de nombres de predictores (caracter)# data Dataframe con los datos de entrenamiento# Cargar las librerías necesariasrequire(dplyr)require(purrr)require(tidyr)require(nnet)require(MASS)# Generar todas las combinaciones posibles de predictores (efectos principales) main_effects_list <-lapply(1:length(x.vars), function(i) {combn(x.vars, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE)# Inicializar una lista para almacenar los resultados results <-list()# Iterar sobre cada combinación de efectos principalesfor (main_effects in main_effects_list) {# Generar términos de interacción de hasta 3 variables interaction_terms <-list()# Para interacciones de 2 variablesif (length(main_effects) >=2) { interaction_terms_2way <-combn(main_effects, 2, function(x) paste(x, collapse =":")) interaction_terms <-c(interaction_terms, interaction_terms_2way) }# Para interacciones de 3 variablesif (length(main_effects) >=3) { interaction_terms_3way <-combn(main_effects, 3, function(x) paste(x, collapse =":")) interaction_terms <-c(interaction_terms, interaction_terms_3way) }# Combinar efectos principales e interacciones all_terms <-c(main_effects, interaction_terms)# Generar todas las combinaciones posibles de términos (incluyendo interacciones)# Solo se incluyen interacciones si sus efectos principales están presentes term_combinations <-list()# Obtener todos los subconjuntos de efectos principales main_effects_subsets <-lapply(1:length(main_effects), function(i) {combn(main_effects, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE)# Para cada subconjunto de efectos principalesfor (me in main_effects_subsets) {# Iniciar con los efectos principales terms <- me# Incluir interacciones solo si todos sus efectos principales están incluidos possible_interactions <- interaction_terms[sapply(interaction_terms, function(x) { vars_in_interaction <-unlist(strsplit(x, ":"))all(vars_in_interaction %in% me) }) ]# Generar todas las combinaciones de interacciones para incluir interaction_subsets <-list(NULL)if (length(possible_interactions) >0) { interaction_subsets <-lapply(1:length(possible_interactions), function(i) {combn(possible_interactions, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE) }# Para cada combinación de interacciones, crear el conjunto completo de términosfor (ints in interaction_subsets) {if (is.null(ints)) { full_terms <- terms } else { full_terms <-c(terms, ints) }# Añadir a la lista de combinaciones de términos term_combinations <-append(term_combinations, list(full_terms)) } }# Ajustar modelos para cada combinación de términosfor (terms in term_combinations) { formula <-as.formula(paste(y, "~", paste(terms, collapse ="+")))# Ajustar el modelo multinomial model <-tryCatch( nnet::multinom(formula, data = data, trace =FALSE),error =function(e) NULL,warning =function(w) NULL )# Si el modelo se ajustó correctamente, almacenar los resultadosif (!is.null(model)) {# Extraer el BIC del modelo bic <-BIC(model)# Almacenar la información en la lista de resultados results[[length(results) +1]] <-list(predictors =paste(terms, collapse =" + "),model = model,BIC = bic ) } } }# Convertir la lista de resultados en un dataframe results_df <- results %>% purrr::map_df(function(res) {data.frame(predictors = res$predictors,BIC = res$BIC,stringsAsFactors =FALSE ) })# Ordenar los modelos por BIC de menor a mayor results_df <- results_df %>%arrange(BIC)return(results_df)}best_subset_multinom_interactions_parallel <-function(y, x.vars, data) {# y Nombre de la variable dependiente (cadena de texto)# x.vars Vector de nombres de predictores (caracter)# data Dataframe con los datos de entrenamiento# Cargar las librerías necesarias dentro de la funciónrequire(dplyr)require(purrr)require(tidyr)require(nnet)require(MASS)require(foreach)require(doParallel)require(progressr)# Iniciar los gestores de progresohandlers(global =TRUE)handlers("txt")# Generar todas las combinaciones posibles de predictores (efectos principales) main_effects_list <-lapply(1:length(x.vars), function(i) {combn(x.vars, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE)# Inicializar una lista para almacenar las fórmulas de los modelos formulas_list <-list()# Generar todas las fórmulas posibles con interacciones hasta de 3 variablesfor (main_effects in main_effects_list) {# Generar términos de interacción de hasta 3 variables interaction_terms <-character(0) # Aseguramos que es un vector de caracteres# Para interacciones de 2 variablesif (length(main_effects) >=2) { interaction_terms_2way <-combn(main_effects, 2, function(x) paste(x, collapse =":"), simplify =TRUE) interaction_terms <-c(interaction_terms, interaction_terms_2way) }# Para interacciones de 3 variablesif (length(main_effects) >=3) { interaction_terms_3way <-combn(main_effects, 3, function(x) paste(x, collapse =":"), simplify =TRUE) interaction_terms <-c(interaction_terms, interaction_terms_3way) }# Generar todas las combinaciones posibles de efectos principales main_effects_subsets <-lapply(1:length(main_effects), function(i) {combn(main_effects, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE)# Para cada subconjunto de efectos principalesfor (me in main_effects_subsets) {# Iniciar con los efectos principales terms <- me# Identificar interacciones cuyos efectos principales están en 'me'if (length(interaction_terms) >0) { possible_interactions <- interaction_terms[vapply(interaction_terms, function(x) { vars_in_interaction <-unlist(strsplit(x, ":"))all(vars_in_interaction %in% me) }, FUN.VALUE =logical(1)) ] } else { possible_interactions <-character(0) }# Generar todas las combinaciones posibles de estas interacciones interaction_subsets <-list(character(0)) # Incluir el caso sin interaccionesif (length(possible_interactions) >0) { interaction_combinations <-lapply(1:length(possible_interactions), function(i) {combn(possible_interactions, i, simplify =FALSE) }) %>%unlist(recursive =FALSE) interaction_subsets <-c(interaction_subsets, interaction_combinations) }# Para cada combinación de interaccionesfor (ints in interaction_subsets) { full_terms <-c(terms, ints)# Crear la fórmula del modelo y almacenarla formula_str <-paste(y, "~", paste(full_terms, collapse ="+")) formulas_list <-append(formulas_list, list(formula_str)) } } }# Eliminar posibles duplicados de fórmulas formulas_list <-unique(formulas_list)# Total de modelos a ajustar total_models <-length(formulas_list)# Iniciar el progreso p <-progressor(steps = total_models)# Ajustar los modelos en paralelo usando foreach results_list <-foreach(i =1:total_models, .packages =c("nnet", "MASS"), .combine ='rbind') %dopar% { formula_str <- formulas_list[[i]] formula <-as.formula(formula_str)# Ajustar el modelo model <-tryCatch( nnet::multinom(formula, data = data, trace =FALSE),error =function(e) NULL,warning =function(w) NULL )# Actualizar el progresop(sprintf("Ajustando modelo %d de %d", i, total_models))# Si el modelo se ajustó correctamente, almacenar los resultadosif (!is.null(model)) { bic <-BIC(model)data.frame(predictors = formula_str,BIC = bic,stringsAsFactors =FALSE ) } else {NULL } }# Convertir los resultados a dataframe y ordenar por BIC results_df <-as.data.frame(results_list) results_df <- results_df %>%arrange(BIC)return(results_df)}num_cores <- parallel::detectCores() -1cl <-makeCluster(num_cores)registerDoParallel(cl)#pacman job kableExtra tidyverse cluster WeightedCluster devtools TraMineR TraMineRextras NbClust haven ggseqplot gridExtra Tmisc factoextra reticulate withr rmarkdown quartooptions(knitr.kable.NA ='')#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:##:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#knitr::knit_hooks$set(time_it =local({ now <-NULLfunction(before, options) {if (before) {# record the current time before each chunk now <<-Sys.time() } else {# calculate the time difference after a chunk res <-ifelse(difftime(Sys.time(), now)>(60^2),difftime(Sys.time(), now)/(60^2),difftime(Sys.time(), now)/(60^1))# return a character string to show the time x<-ifelse(difftime(Sys.time(), now)>(60^2),paste("Tiempo que demora esta sección:", round(res,1), "horas"),paste("Tiempo que demora esta sección:", round(res,1), "minutos"))paste('<div class="message">', gsub('##', '\n', x),'</div>', sep ='\n') } }}))knitr::opts_chunk$set(time_it =TRUE)#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:format_cells <-function(df, rows ,cols, value =c("italics", "bold", "strikethrough")){# select the correct markup# one * for italics, two ** for bold map <-setNames(c("*", "**", "~~"), c("italics", "bold", "strikethrough")) markup <- map[value] for (r in rows){for(c in cols){# Make sure values are not factors df[[c]] <-as.character( df[[c]])# Update formatting df[r, c] <-ifelse(nchar(df[r, c])==0,"",paste0(markup, gsub(" ", "", df[r, c]), markup)) } }return(df)}#To produce line breaks in messages and warningsknitr::knit_hooks$set(error =function(x, options) {paste('\n\n<div class="alert alert-danger">',gsub('##', '\n', gsub('^##\ Error', '**Error**', x)),'</div>', sep ='\n') },warning =function(x, options) {paste('\n\n<div class="alert alert-warning">',gsub('##', '\n', gsub('^##\ Warning:', '**Warning**', x)),'</div>', sep ='\n') },message =function(x, options) {paste('<div class="message">',gsub('##', '\n', x),'</div>', sep ='\n') })#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_invisible("Function to format CreateTableOne into a database")as.data.frame.TableOne <-function(x, ...) {capture.output(print(x,showAllLevels =TRUE, varLabels = T,...) -> x) y <-as.data.frame(x) y$characteristic <- dplyr::na_if(rownames(x), "") y <- y %>%fill(characteristic, .direction ="down") %>% dplyr::select(characteristic, everything())rownames(y) <-NULL y}#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_# Austin, P. C. (2009). The Relative Ability of Different Propensity # Score Methods to Balance Measured Covariates Between # Treated and Untreated Subjects in Observational Studies. Medical # Decision Making. https://doi.org/10.1177/0272989X09341755smd_bin <-function(x,y){ z <- x*(1-x) t <- y*(1-y) k <-sum(z,t) l <- k/2return((x-y)/sqrt(l))}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:if(.Platform$OS.type =="windows") withAutoprint({memory.size()memory.size(TRUE)memory.limit()})
> memory.size()
[1] Inf
> memory.size(TRUE)
[1] Inf
> memory.limit()
[1] Inf
Código
#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:func_tab_range_clus<-function(range_clus){rbind.data.frame(lapply(list(as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster2)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster3)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster4)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster5)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster6)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster7)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster8)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster9)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster10)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster11)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster12)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster13)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster14)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster15)))) ),function(x) { length_out <-max(sapply(list(as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster2)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster3)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster4)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster5)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster6)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster7)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster8)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster9)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster10)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster11)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster12)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster13)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster14)))),as.vector(rev(sort(table(range_clus$clustering$cluster15)))) ), length))c(x, rep(NA, length_out -length(x))) } ))%>%t() |>data.frame()%>%`rownames<-`(NULL)}frobenius_norm <-function(matrix1, matrix2) {if (!all(dim(matrix1) ==dim(matrix2))) {stop("Matrices must have the same dimensions") }# Replace NA values with 0 (or any other desired default) matrix1[is.na(matrix1)] <-0 matrix2[is.na(matrix2)] <-0# Calculate the residuals residuals <- matrix1 - matrix2# Frobenius norm frobenius <-sqrt(sum(residuals^2))return(frobenius)}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:confcqi2 <-function(nullstat, quant, n){ alpha <- (1-quant)/2#calpha <- alpha+(alpha-1)/n#print(c(calpha, alpha))#minmax <- quantile(nullstat, c(calpha, 1-calpha)) minmax <-quantile(nullstat, c(alpha, 1-alpha))return(minmax)}normstatcqi2 <-function(bcq, stat, norm=TRUE){ origstat <- bcq$clustrange$stats[, stat] nullstat <- bcq$stats[[stat]]#normstat <- rbind(nullstat, origstat)if(norm){for(i inseq_along(origstat)){ mx <-mean(nullstat[, i]) sdx <-sd(nullstat[, i]) nullstat[ , i] <- (nullstat[, i]-mx)/sdx origstat[i] <- (origstat[i]-mx)/sdx } } alldatamax <-apply(nullstat, 1, max)#as.vector(xx) sumcqi <-list(origstat=origstat, nullstat=nullstat, alldatamax=alldatamax)return(sumcqi)}print.seqnullcqi.powder <-function(x, norm =FALSE, quant =0.95, digits =2, append =FALSE, ...) {cat("Parametric bootstrap cluster analysis validation\n")cat("Sequence analysis null model:", deparse(x$nullmodel), "\n")cat("Number of bootstraps:", x$R, "\n")cat("Clustering method:", ifelse(x$kmedoid, "PAM/K-Medoid", paste0("hclust with ", x$hclust.method)), "\n")cat("Seqdist arguments:", deparse(x$seqdist.args), "\n\n\n") alls <-as.data.frame(x$clustrange$stats) quants <-rep("", ncol(alls))names(quants) <-colnames(alls)for (ss incolnames(alls)) { sumcqi <-normstatcqi2(x, stat = ss, norm = norm) alls[, ss] <-as.character(round(sumcqi$origstat, digits = digits)) borne <-as.character(round(confcqi2(sumcqi$alldatamax, quant, x$R), digits = digits)) quants[ss] <-paste0("[", borne[1], "; ", borne[2], "]") } results_tibble <- tibble::as_tibble(rbind(alls, rep("", length(quants)), quants))# Print a summary to the console for immediate feedbackrownames(results_tibble) <-c(rownames(x$clustrange$stats), "", paste("Null Max-T", quant, "interval")) results_df <-as.data.frame(results_tibble)print(results_tibble, ...)return(list(results_tibble= results_tibble, results_df= results_df ))}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:##:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:# Función para aplicar la prueba de Fisher a todas las combinaciones de filas usando todas las columnasfisher_posthoc_all_cols <-function(contingency_table) {# Obtener combinaciones de filas (pares) row_pairs <-combn(rownames(contingency_table), 2, simplify =FALSE)# Aplicar la prueba de Fisher a cada par de filas usando todas las columnas al mismo tiempo results <-map_dfr(row_pairs, function(pair) {# Crear tabla de 2xN para el par de filas en todas las columnas sub_table <- contingency_table[pair, , drop =FALSE]# Aplicar el test de Fisher test_result <-fisher.test(sub_table, simulate.p.value=T,B=1e4)# Devolver los resultados en un data frametibble(Row1 = pair[1],Row2 = pair[2],p.value = test_result$p.value ) })# Ajustar p-valores usando el método de Holm results <- results %>%mutate(p.adjusted =p.adjust(p.value, method ="holm"))return(results)}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:save_base_plot_as_grob <-function(plot_expr, res=300, width =1600, height=1200) {# Crea un archivo temporal con extensión .png filename <-tempfile(fileext =".png")# Guarda el gráfico en alta resolución en el archivo temporalpng(filename, width = width, height = height, res = res)replayPlot(plot_expr) # Reproduce el gráfico grabadodev.off() # Cierra el dispositivo gráfico# Convierte el archivo PNG en un objeto gráfico (grob) grob <- grid::rasterGrob(png::readPNG(filename), interpolate =TRUE)return(grob) # Devuelve el grob}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:chisq_cramerv<-function(contingency_table){ chisq_test <-chisq.test(contingency_table) cramers_v <-sqrt(chisq_test$statistic / (sum(contingency_table) * (min(dim(contingency_table)) -1)))list(chisq_statistic=sprintf("%1.2f", chisq_test$statistic), chisq_df= chisq_test$parameter, chisq_p_value =ifelse(chisq_test$p.value<.001, "<0.001", sprintf("%1.4f", chisq_test$p.value)), cramers_v =sprintf("%1.2f", cramers_v))}#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#:#oneway_anova_effect_size <-function(values, group) {# Perform one-way ANOVA anova_result <-aov(values ~ group)# Summarize ANOVA results anova_summary <-summary(anova_result)# Extract sums of squares ss_between <- anova_summary[[1]]$"Sum Sq"[1] ss_total <-sum(anova_summary[[1]]$"Sum Sq")# Calculate eta-squared eta_squared <- ss_between / ss_total# Return ANOVA summary and effect sizelist(anova_summary = anova_summary,eta_squared = eta_squared )}
Resultados
2. Mensual
2.1. Sensibilidad= PAM (OM), sol 2 cluster- diagnósticos
Código
# pam om month 2# pam om month 2invisible("Información sobre la solución")invisible("H:/Mi unidad/PERSONAL ANDRES/UCH_salud_publica/asignaturas/un_inv_II/_hist_sintaxis/un_inv_ii5_explorar_soluciones.R")# invisible("Hacemos clasificación de pertenencia cluster y ponemos etiquetas")ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$clus_pam_om2 <-factor(pamRange_month_om$clustering$cluster2,levels=rev(attr( sort(table(pamRange_month_om$clustering$cluster2)), "name")),labels=c("6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)", "6025, Un trimestre, TUS(1)" ))invisible("Me da buena: 0,61 en promedio. Se mantiene. El problema está con 5710 es negativo")sil_pam_om_clus2_m_nostd<-silhouette(as.integer(pamRange_month_om$clustering$cluster2), as.dist(dist_month_om))# Crear etiquetas personalizadascluster_labels2_m <-paste0("Cluster ", seq_along(attr(summary(sil_pam_om_clus2_m_nostd)$clus.avg.widths, "dimnames")[[1]]), ":\nAWS ", sprintf("%1.2f",summary(sil_pam_om_clus2_m_nostd)$clus.avg.widths))# Graficar con etiquetas personalizadasfviz_silhouette( sil_pam_om_clus2_m_nostd, lab.clusters = cluster_labels2_m, # Etiquetas personalizadas para los clústeresprint.summary=F) +scale_fill_grey(start =0.2, end =0.8, labels = cluster_labels2_m) +# Escala de grisesscale_color_grey(start =0.2, end =0.8, labels = cluster_labels2_m)+# Escala de grises para los bordeaggtitle(NULL)+labs(y="Ancho medio de la silueta", x="Conglomerados")# Elimina el título
De la figura se desprende que el conglomerado 6035, Un año despues, TSM tiene un ajuste promedio negativo. En menor medida, el conglomerado 6036, TSM, 1 año después, otras causas, tiene algunos valores de ancho de silueta negativos. Posteriormente vemos una tabla de contingencia para entender el origen de los nuevos conglomerados.
Código
# Crear la tabla de frecuencias proporcionales redondeadatabla_proporciones2 <-round(prop.table(table(pamRange_month_om$clustering$cluster2, pamRange_quarter_om$clustering$cluster4), 2), 2)# Convertir la tabla a un formato limpio con kableknitr::kable(tabla_proporciones2, caption ="Proporciones de Clusters, Solución de 2 vs. 4 conglomerados", col.names =c("5939, Un semestre TSM(1)", "5989, Comorbilidad un trimestre(2)", "6025, Un trimestre, TUS(3)", "6035, Un trimestre, TSM(4)"), align ="c")
Proporciones de Clusters, Solución de 2 vs. 4 conglomerados
Generamos un gráfico de PPOO por cada conglomerado.
Código
ppoo_clus_pre_pam_om2_m<- df_filled[,c("run","glosa_pueblo_originario")] %>% dplyr::left_join(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens[,c("run", "clus_pam_om2","factor_inclusivo_real_hist_mas_autperc")], by="run", multiple="first") %>% dplyr::mutate(glosa_pueblo_originario_rec= dplyr::case_when(glosa_pueblo_originario=="NINGUNO"& factor_inclusivo_real_hist_mas_autperc!="00"~"DESCONOCIDO", T~glosa_pueblo_originario)) %>% janitor::tabyl(glosa_pueblo_originario_rec, clus_pam_om2) %>% janitor::adorn_percentages("row")#scale_fill_manual(values = rev(c("#D2B48C", "#E27A5B", "#708090", "#6B8E23", "#506070" , "#2F4F4F", "#20B2AA"))) +reshape2::melt(ppoo_clus_pre_pam_om2_m, id.vars ="glosa_pueblo_originario_rec") %>% dplyr::mutate(glosa_pueblo_originario_rec= dplyr::recode(glosa_pueblo_originario_rec, "OTRO (ESPECIFICAR)"="OTRO(n=77)", "RAPA NUI (PASCUENSE)"="RAPA NUI(n=34)", "YAGÁN (YÁMANA)"="YAGÁN(n=2)","AYMARA"="AYMARA(n=13)","COLLA"="COLLA(n=6)","DIAGUITA"="DIAGUITA(n=3)","KAWÉSQAR"="KAWÉSQAR(n=4)","MAPUCHE"="MAPUCHE(n=255)","DESCONOCIDO"=".DESCONOCIDO(n=1.985)","NINGUNO"=".NINGUNO(n=9.156)")) %>%ggplot(aes(x = glosa_pueblo_originario_rec, y = value, fill = variable)) +geom_bar(stat ="identity", position ="fill") +scale_fill_manual(values =c(#, al menos un TSM(2)"6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)"="#D2B48C", "6025, Un trimestre, TUS(1)"="#E27A5B")) +labs(title =NULL,x ="Grupo Étnico",y ="Proporción de Casos",fill ="Grupos") +# Cambia el título de la leyenda a "Grupos"theme_minimal() +theme(axis.text.y =element_text(size =12), # Tamaño de las etiquetas de los grupos étnicosaxis.text.x =element_text(size =12), # Tamaño de las etiquetas del eje Xaxis.title.x =element_text(size =14), # Tamaño del título del eje Xaxis.title.y =element_text(size =14), # Tamaño del título del eje Yplot.title =NULL, # Tamaño y estilo del título del gráficolegend.title =element_text(size =14, margin =margin(b =-.1)), # Tamaño del título de la leyendalegend.spacing.y =unit(1.5, "lines"),legend.box.spacing =unit(0.5, "lines"), # Controla el espacio entre la leyenda y el gráficolegend.margin =margin(5, 5, 5, 5), legend.key.height =unit(1, "cm"), legend.text =element_text(size =12) # Tamaño del texto de la leyenda ) +coord_flip() # Hacer el gráfico horizontalggsave("_figs/grafico_ancho_achatado_pam_om2_m.png", width =10, height =5, dpi=1000)
PPOO por cluster
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
Vemos que en los ingresados Rapa Nui, hay una importante proporción de participantes (50%) son clasificados en el conglomerado “5710, TSM, 1 año después, TSM”.
2.1.1. Trayectorias
Vemos los gráficos de las trayectorias
Código
categories_pam_om2_m<-attr(States_Wide.seq_month_t_prim_adm_cens, "labels")new_labels <- categories_pam_om2_mnew_labels[which(categories_pam_om2_m =="Otras causas")] <-"Otras\ncausas"#new_labels[which(categories == "Consumo\nde sustancias")] <- "Consumo de\nsustancias"# Creamos un vector con las columnas llenando con NA si faltan valoressil_pam_om_clus2_m <-wcSilhouetteObs(as.dist(dist_month_om), pamRange_month_om$clustering$cluster2, measure="ASW")seq_plot_pam_om2_m <-ggseqiplot(States_Wide.seq_month_t_prim_adm_cens, group= ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$clus_pam_om2,facet_ncol=1, facet_nrow=2, sortv=sil_pam_om_clus2_m) +theme(legend.position ="none")+labs(x="Trimestres", y="# IDs de usuarios")+#guides(fill = guide_legend(nrow = 1))+theme(panel.spacing =unit(0.1, "lines"), # Reduce el espaciado entre los panelesaxis.text.y =element_text(size =15), # Tamaño de las etiquetas de los grupos étnicosaxis.text.x =element_text(size =15), # Tamaño de las etiquetas del eje Xaxis.title.x =element_text(size =15), # Tamaño del título del eje Xaxis.title.y =element_text(size =15, margin =margin(r =-10)),#,margin = margin(l = -10)),strip.text =element_text(size =10, margin =margin(b =-15, t=10)),legend.text =element_text(size =15),legend.spacing.x =unit(0.1, 'cm'), # Alinea el título de la leyenda hacia la izquierdalegend.box.margin =margin(t =0, r =0, b =0, l =-50),legend.position ="bottom", legend.justification ="left",panel.spacing.y =unit(0.2, "lines"),plot.margin =margin(10, 10, 10, 10), # Ajusta márgenes globalesstrip.placement ="outside", # Para colocar las tiras fuera de los ejesstrip.background =element_blank() # Elimina el fondo para que parezca más espacioso#legend.key.size = unit(1.5, "lines"), # Aumenta el tamaño de los símbolos en la leyenda )+guides(fill =guide_legend(nrow =1)) +scale_fill_manual(labels = new_labels, values=c("#E2725B", "#556B2F", "#D2B48C",#"#8B4513","#FFFFFF","#808080","#000000"))+scale_color_manual(labels = new_labels, values=c("#E2725B", "#556B2F", "#D2B48C",#"#8B4513","#FFFFFF","#808080","#000000"))seq_plot_pam_om2_m ggsave(filename="_figs/clusters_pam_om2_m_mod.png", seq_plot_pam_om2_m, width =11, height =5.5, dpi=1000)
Trayectorias de hospitalización, orden de sujetos según el primer estado observado y su duración, representando a cada individuo como una línea en el gráfico (observaciones ordenadas de acuerdo a ASW)
Tiempo que demora esta sección: 0.6 minutos
Código
seq_plot2_pam_om2_m <-ggseqdplot(States_Wide.seq_month_t_prim_adm_cens, group= ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$clus_pam_om2,facet_ncol=1, facet_nrow=2) +theme(legend.position ="none")+# Colocar la leyenda abajolabs(x="Trimestres", y="Frecuencia relativa de estados")+theme(panel.spacing =unit(0.1, "lines"),axis.text.y =element_text(size =15), # Tamaño de las etiquetas de los grupos étnicosaxis.text.x =element_text(size =15), # Tamaño de las etiquetas del eje Xaxis.title.x =element_text(size =15), # Tamaño del título del eje Xaxis.title.y =element_text(size =15, margin =margin(r =-5)),strip.text =element_text(size =11),panel.spacing.y =unit(0.5, "lines"),strip.placement ="outside", # Para colocar las tiras fuera de los ejesstrip.background =element_blank() # Elimina el fondo para que parezca más espacioso#legend.key.size = unit(1.5, "lines"), # Aumenta el tamaño de los símbolos en la leyenda ) # Colocar la leyenda abajoseq_plot2_pam_om2_mggsave("_figs/clusterspam_om22_m_mod.png",seq_plot2_pam_om2_m, width =8.5, height =5.5, dpi=1000)table_data_pam_om2_m <-sprintf("%1.2f",pamRange_month_om$stats[1,])table_data_pam_om2_m <-as.data.frame(t(table_data_pam_om2_m))colnames(table_data_pam_om2_m)<-attr(pamRange_month_om$stats, "name")table_data_pam_om2_m %>% knitr::kable()
PBC
HG
HGSD
ASW
ASWw
CH
R2
CHsq
R2sq
HC
0.16
0.39
0.39
0.41
0.41
805.17
0.12
713.22
0.11
0.48
Trayectorias de hospitalización, frecuencia relativa de estados en un gráfico de barras apiladas por trimestre.
Trayectorias de hospitalización, frecuencia relativa de estados en un gráfico de barras apiladas por trimestre.
Tiempo que demora esta sección: 0.1 minutos
De este modo, presenta el cambio agregado en la distribución de estados a lo largo del tiempo, sin considerar las secuencias individuales.
Código
invisible("Definimos las observaciones que tienen siluetas negativas")sil_neg_pam_om_clus2_m <-which(sil_pam_om_clus2_m<0)invisible("A qué conglomerados pertenecen?")table(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens[sil_neg_pam_om_clus2_m, "clus_pam_om2"])ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$rn<-1:nrow(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens)
clus_pam_om2
6035, Un trimestre, al menos un TSM(2) 6025, Un trimestre, TUS(1)
159 0
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
2.1.2.Exploración transiciones
2.1.2.a Transiciones- RM y no RM
Tasas de transición no RM a RM y viceversa
Código
invisible("Tasas de transición no RM a RM y viceversa")trim_tasa_pam_om2_m_cens_cnt<-seqcount_t(States_Wide.seq_month_t_prim_adm_RM_cens, group=ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$clus_pam_om2) %>% dplyr::filter(count>0) %>% dplyr::mutate(trans =paste0(from,"_", to)) %>% dplyr::mutate(across(c("from","to"),~gsub("\\[->\\s*|\\s*->\\s*\\]|\\[|\\]", "", .))) trim_tasa_pam_om2_m_cens_rate<-seqtrate_t(States_Wide.seq_month_t_prim_adm_RM_cens, group=ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$clus_pam_om2) %>% dplyr::filter(rate>0) %>% dplyr::mutate(trans =paste0(from,"_", to)) %>% dplyr::mutate(across(c("from","to"),~gsub("\\[->\\s*|\\s*->\\s*\\]|\\[|\\]", "", .)))
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
Código
trim_tasa_pam_om2_m_cens_rate %>% dplyr::left_join(trim_tasa_pam_om2_m_cens_cnt, by=c("from"="from", "glosa_sexo"="glosa_sexo","to"="to")) %>% dplyr::rename("recuento"="count") %>% dplyr::filter(from %in%c("RM", "noRM")) %>%ggplot(aes(x = from, y = to, fill = rate, size=log(recuento+1))) +geom_tile() +coord_flip()+scale_fill_gradient(low ="white", high ="blue") +# Ajusta la escala de colores según tus preferenciaslabs(title ="Tasas de transición, Trimestre (s/censura)",x ="Desde",y ="Hacia",fill ="Rate") +theme_minimal() +facet_wrap(~glosa_sexo)+theme(axis.text.x =element_text(angle =45, hjust =1))+geom_text(aes(label =sprintf("%1.2f", rate), size =log(recuento+1)*.5), color ="black")invisible("Hay muy pocos casos que se entrecruzan entre noRM y RM (fuera de la diagnonal)")
Porcentajes de transición no-RM y RM por cada cluster
Tiempo que demora esta sección: 0.1 minutos
Hay muy pocos casos que se entrecruzan entre noRM y RM (fuera de la diagnonal)
Tampoco se observa asociación alguna. Hicimos una prueba post-hoc usando Bonferroni
2.1.3.b. Comparación covariables- Mortalidad
Código
# invisible("No hay nada, el tiempo promedio de censura es similar")ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::mutate(death_time_rec=ifelse(death_time==60,0,1)) %>% janitor::tabyl(clus_pam_om2,death_time_rec) %>% dplyr::mutate(`1`=paste0(`1`," (", scales::percent(`1`/(`0`+`1`), accuracy=.1),")")) %>% dplyr::left_join(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::group_by(clus_pam_om2) %>% dplyr::summarise(mean=sprintf("%1.1f",mean(cens_time)),median=sprintf("%1.1f",quantile(cens_time, .5)), p25=sprintf("%1.1f",quantile(cens_time, .25)), p75=sprintf("%1.1f",quantile(cens_time, .75))), by="clus_pam_om2") %>% dplyr::select(-`0`) %>% knitr::kable("markdown", col.names=c("Conglomerado","Mortalidad observada", "Promedio", "Mediana", "Q1", "Q3"), caption="Post-hoc, conglomerado vs. Mortalidad y tiempo a censura")
Post-hoc, conglomerado vs. Mortalidad y tiempo a censura
Conglomerado
Mortalidad observada
Promedio
Mediana
Q1
Q3
6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)
56 (1.0%)
53.8
53.8
51.0
56.5
6025, Un trimestre, TUS(1)
14 (2.0%)
54.6
54.9
51.6
57.8
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
Código
# Cargar las librerías necesariaslibrary(survival)library(ggplot2)# Crear la variable de supervivenciasurv_obj <-Surv(time = ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$death_time,event =ifelse(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens$death_time==60,0,1))# Realizar el análisis de Log-Rank (survdiff)surv_diff <-survdiff(surv_obj ~ clus_pam_om2,data = ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens)# Mostrar los resultados del testprint(surv_diff)
Call:
survdiff(formula = surv_obj ~ clus_pam_om2, data = ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens)
N Observed Expected
clus_pam_om2=6035, Un trimestre, al menos un TSM(2) 5337 56 61.9
clus_pam_om2=6025, Un trimestre, TUS(1) 701 14 8.1
(O-E)^2/E (O-E)^2/V
clus_pam_om2=6035, Un trimestre, al menos un TSM(2) 0.562 4.86
clus_pam_om2=6025, Un trimestre, TUS(1) 4.295 4.86
Chisq= 4.9 on 1 degrees of freedom, p= 0.03
Código
# Ajustar el modelo de Kaplan-Meierkm_fit <-survfit(surv_obj ~ clus_pam_om2,data = ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens)# Extraer los datos del modelo Kaplan-Meier para usar con ggplotkm_data <-data.frame(time = km_fit$time,surv = km_fit$surv,upper = km_fit$upper,lower = km_fit$lower,strata =rep(c("6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)","6025, Un trimestre, TUS(1)"), km_fit$strata))# Crear el gráfico de Kaplan-Meier con ggplot2ggplot(km_data, aes(x = time, y = surv, color = strata)) +geom_step(size =1.2) +# Curvas de supervivenciageom_ribbon(aes(ymin = lower, ymax = upper, fill = strata), alpha =0.2, color =NA) +# Intervalos de confianzalabs(title ="Curvas de Kaplan-Meier",x ="Tiempo (meses)",y ="Probabilidad de Supervivencia",color ="Grupo",fill ="Grupo" ) +theme_minimal() +theme(legend.position ="bottom") +scale_color_manual(values =c("#E2725B", "#D2B48C")) +# Colores para las curvasscale_fill_manual(values =c("#E2725B", "#D2B48C")) # Colores para las áreas sombreadas
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
Código
ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::mutate(death_time_rec=ifelse(death_time==60,0,1)) %>% janitor::tabyl(death_time_rec,clus_pam_om2) %>% janitor::chisq.test(correct=T)#X-squared = 11.293, df = 6, p-value = 0.07972ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::mutate(death_time_rec=ifelse(death_time==60,0,1)) %>% janitor::tabyl(death_time_rec,clus_pam_om2) %>% janitor::fisher.test(simulate.p.value=T, B=1e5)#p-value = 0.04477message("Descartando valores negativos en sil width")chisq_cramerv(with(subset(ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens, !rn %in% sil_neg_pam_om_clus2_m)%>% dplyr::mutate(death_time_rec=ifelse(death_time==60,0,1)), table(death_time_rec , clus_pam_om2)))#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_##_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_#_tab_cl_mortalidad_pam_om2_m<- ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::mutate(death_time_rec=ifelse(death_time==60,0,1)) |> janitor::tabyl(death_time_rec,clus_pam_om2) |>as.matrix(ncol=2)labels_pam_om2_m <-c("6035, Un trimestre, TSM(2)","6025, Un trimestre, TUS(1)")# Realizar el análisis y crear la tabla directamentepairwise.prop.test(t(tab_cl_mortalidad_pam_om2_m[,2:ncol(tab_cl_mortalidad_pam_om2_m)]), p.adjust.method ="holm")$p.value |>as.table() |>as.data.frame() |>rename(Grupo_1 = Var1, Grupo_2 = Var2, p_value = Freq) |>filter(!is.na(p_value)) |>mutate(Grupo_1 = labels_pam_om2_m[as.numeric(Grupo_1)],Grupo_2 = labels_pam_om2_m[as.numeric(Grupo_2)],p_value =ifelse(p_value <.001, "<.001", sprintf("%1.3f",p_value)) ) |>kable(col.names =c("Grupo 1", "Grupo 2", "Valor p ajustado"),align ="l",caption="Corrección parcial por comparaciones múltiples (Holm–Bonferroni)" )
Pearson's Chi-squared test with Yates' continuity correction
data: .
X-squared = 4.0662, df = 1, p-value = 0.04375
Fisher's Exact Test for Count Data
data: .
p-value = 0.03707
alternative hypothesis: true odds ratio is not equal to 1
95 percent confidence interval:
0.9823357 3.5202478
sample estimates:
odds ratio
1.92159
$chisq_statistic
[1] "3.88"
$chisq_df
df
1
$chisq_p_value
[1] "0.0488"
$cramers_v
[1] "0.03"
Corrección parcial por comparaciones múltiples (Holm–Bonferroni)
Grupo 1
Grupo 2
Valor p ajustado
6035, Un trimestre, TSM(2)
6035, Un trimestre, TSM(2)
0.044
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
Se constata una asociación muy modesta entre la pertenencia a un conglomerado y mortalidad, siendo 6025, Un trimestre, TUS(1) mayores sus chances de mortalidad.
Al parecer, el conglomerado 6025, Un trimestre, TUS(1) tendría una proporción significativamente mayor que el resto de pacientes fuera de la RM, aunque con una fuerza de asociación débil.
De la tabla anterior, se observa que participantes pertenecientes al conglomerado “6025, Un trimestre, TUS(1)” presenta una menor proporción de residentes de la Región Metropolitana.
2.1.3.e. Comparación covariables- Región
Código
tab_cluster_region_pam_om2_m<-ing_dt_ing_calendar_month_t_desde_primera_adm_dedup_wide2_cens %>% dplyr::mutate(estab_homo_base=as.numeric(estab_homo_base))%>% dplyr::inner_join(data_long_establecimiento_2024_std[,c("ESTAB_HOMO", "codigo_region", "nivel_de_atencion", "nivel_de_complejidad")], by =c("estab_homo_base"="ESTAB_HOMO"), multiple ="first") %>% janitor::tabyl(codigo_region, clus_pam_om2) %>% janitor::adorn_percentages("col") %>% janitor::adorn_rounding(digits =2)#colnames(tab_cluster_region_pam_om4_q)<- c("reg", "c1", "c4", "c3", "c5", "c6", "c7", "c8", "c9", "c2")cod_reg_homo_pam_om2_m<-data.frame(codigo_region =1:16,nombre_region =c("Región de Tarapacá","Región de Antofagasta","Región de Atacama","Región de Coquimbo","Región de Valparaíso","Región del Libertador General Bernardo O'Higgins","Región del Maule","Región del Biobío","Región de La Araucanía","Región de Los Lagos","Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo","Región de Magallanes y de la Antártica Chilena","Región Metropolitana de Santiago","Región de Los Ríos","Región de Arica y Parinacota","Región de Ñuble" ),stringsAsFactors =FALSE)dplyr::mutate(tab_cluster_region_pam_om2_m, promedio_fila =rowMeans(across(2:length(colnames(tab_cluster_region_pam_om2_m))))) %>% dplyr::arrange(desc(promedio_fila)) %>% dplyr::left_join(cod_reg_homo_pam_om7_q, by="codigo_region") %>% dplyr::select(codigo_region, nombre_region, everything()) %>% dplyr::select(-promedio_fila) %>% dplyr::mutate_at(3:(length(colnames(tab_cluster_region_pam_om2_m))+1),~scales::percent(.)) %>% knitr::kable(caption="Porcentaje por región")
Porcentaje por región
codigo_region
nombre_region
6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)
6025, Un trimestre, TUS(1)
13
Región Metropolitana de Santiago
46%
36%
10
Región de Los Lagos
6%
19%
5
Región de Valparaíso
8%
12%
8
Región del Biobío
10%
8%
9
Región de La Araucanía
5%
4%
6
Región del Libertador General Bernardo O’Higgins
4%
3%
7
Región del Maule
4%
3%
14
Región de Los Ríos
3%
3%
1
Región de Tarapacá
2%
2%
11
Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo
2%
2%
16
Región de Ñuble
2%
2%
2
Región de Antofagasta
2%
1%
3
Región de Atacama
2%
1%
12
Región de Magallanes y de la Antártica Chilena
1%
2%
4
Región de Coquimbo
1%
1%
15
Región de Arica y Parinacota
2%
0%
Tiempo que demora esta sección: 0 minutos
A partir de la tabla, salta a la vista un importante porcentaje de pacientes clasificados en el conglomerado 6025, Un trimestre, TUS (19% vs. 6%) que fue atendido en la Región de Los Lagos y en la Región de Valparaíso (12% vs. 8%).
Porcentajes por columna, conglomerado vs. macrozona
macrozona
6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)
6025, Un trimestre, TUS(1)
Macrozona Austral
179 (3%)
29 (4%)
Macrozona Centro
502 (9%)
91 (13%)
Macrozona Centro Sur
1067 (20%)
118 (17%)
Macrozona Norte
427 (8%)
31 (4%)
Macrozona Sur
730 (14%)
183 (26%)
RM
2432 (46%)
249 (36%)
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Hay una asociación significativa aunque débil entre macrozona y pertenencia a cluster.
El conglomerado 6025, Un trimestre, TUS (1) concentra un porcentaje reducido en la Macrozona Centro (9% vs. 13%). Por otro lado, pacientes en 6025, Un trimestre, TUS (1) pertenecen en mayor proporción a la Macrozona Sur (26% vs. 14%), aunque menor en la Macrozona Norte (4% vs. 8%).
pairwise_chisq_gof_test(tab_clus_macrozona_pam_om2_m[-1], p.adjust.method="holm")|> knitr::kable("markdown", caption="Dependencia categórica sol. 2 conglomerados (mensual), por pares de categorías en Macrozona (corrección Holm-Bonferroni)")#Groups sharing a letter are not significantlt different (alpha = 0.05)
Dependencia categórica sol. 2 conglomerados (mensual), por pares de categorías en Macrozona (corrección Holm-Bonferroni)
n
group1
group2
statistic
p
df
p.adj
p.adj.signif
6038
6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)
6025, Un trimestre, TUS(1)
100.155
0
5
0
****
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Las pruebas post-hoc muestran que un mayor porcentaje de pacientes clasificados en 6035, Un trimestre, TSM(2) se concentran en la macrozona norte y menos en la macrozona sur y centro. En cambio, 6025, Un trimestre, TUS(1) concentra un mayor porcentaje en la macrozona sur y centro, mientras que menos en la macrozona norte.
Hay una asociación con una fuerza débil-moderada entre la pertenencia a un conglomerado y el sexo. Entre pacientes clasificados a 6025, Un trimestre, TUS(1) hay un menor porcentaje de mujeres (30% vs. 57%).
Two Sample t-test
data: min_edad_anos by clus_pam_om2
t = -11.073, df = 6036, p-value < 2.2e-16
alternative hypothesis: true difference in means between group 6035, Un trimestre, al menos un TSM(2) and group 6025, Un trimestre, TUS(1) is not equal to 0
95 percent confidence interval:
-2.255670 -1.577134
sample estimates:
mean in group 6035, Un trimestre, al menos un TSM(2)
20.53438
mean in group 6025, Un trimestre, TUS(1)
22.45078
Cohen's d
d estimate: -0.4448548 (small)
95 percent confidence interval:
lower upper
-0.5240079 -0.3657017
Cohen's d
d estimate: -0.4557787 (small)
95 percent confidence interval:
lower upper
-0.5351028 -0.3764547
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Los resultados del test de Welch indicaron que la diferencia de medias entre el conglomerado 6035, Un trimestre, TSM(2) (𝑀 = 20.5) y el grupo 6025, Un trimestre, TUS(1) (𝑀=22.5) fue estadísticamente significativa,𝑡(6036)=−11.07 𝑝<0.001, con un intervalo de confianza del 95% de [−2.56,−1.58]. y un tamaño del efecto pequeño (Cohen D= -0.46).
Pearson's Chi-squared test
data: .
X-squared = 11.459, df = 4, p-value = 0.02186
Fisher's Exact Test for Count Data with simulated p-value (based on
1e+05 replicates)
data: .
p-value = 0.01693
alternative hypothesis: two.sided
Pearson's Chi-squared test
data: .
X-squared = 11.99, df = 4, p-value = 0.01743
Fisher's Exact Test for Count Data with simulated p-value (based on
1e+05 replicates)
data: .
p-value = 0.01262
alternative hypothesis: two.sided
Porcentajes por columna, conglomerado vs. Beneficios
La asociación es levemente significativa y muy débil. Pacientes clasificados en 6035, Un trimestre, TSM(6) presenta un mayor porcentaje de pacientes en este conglomerado en una previsión de FFAA. Con todo, esta asociación no es consistente en las distintas pruebas.
A partir de la tabla de contingencia y la prueba de residuos, se observa que 6025, Un trimestre, TUS(1) presenta un mayor porcentaje en establecimientos de Alta complejidad (68% vs. 61%) y menores porcentajes en Mediana complejidad (12% vs. 20%) y mayor porcentaje de casos con calificación Pendiente (3% vs. 1%).
2.1.4. Compilación comparación covariables
Código
#dput(attr(t(tab_clus_compl_pam_om7_q),"dimnames")[[1]])# Definir los datos correctamentedata_pam_om2_m <-cbind.data.frame(Grupo=c("6035, Un trimestre, TSM(2)", "6025, Un trimestre, TUS(1)"), PPOO_bin =c(NA, NA), PPOO_sinautoid =c(NA, NA), PPOO_conautoid =c(NA, NA), Mortalidad =c(NA, "+"), RM =c(NA, "-"), `Macrozona-Austral`=c(NA, NA), `Macrozona-Centro`=c(NA, "-"), `Macrozona-Centro Sur`=c(NA, NA), `Macrozona-Norte`=c(NA, "-"), `Macrozona-Sur`=c(NA, "+"), Sexo_mujeres =c(NA, "-"), `Edad ingreso`=c(NA, "+"), `Previsión-FFAA`=c(NA, NA), `Previsión-FONASA A`=c(NA, NA), `Previsión-FONASA BC`=c(NA, NA), `Previsión-FONASA D`=c(NA, NA), `Previsión-ISAPRE`=c(NA, NA), `NivComp-Baja`=c(NA, NA), `NivComp-Media`=c(NA, "+"), `NivComp-Alta`=c(NA, "-"))## Asegurar que los nombres de las columnas sean válidos y no haya espacios en blanco# Derretir el dataframe para que sea adecuado para ggplot2data_melt_pam_om2_m <- reshape2::melt(data_pam_om2_m, id.vars ='Grupo', variable.name ='Variable', value.name ='Asociación')# Reemplazar los NA por un valor vacíodata_melt_pam_om2_m$Asociación[is.na(data_melt_pam_om2_m$Asociación)] <-"\n"# Crear el gráfico con ggplotdata_melt_pam_om2_m %>% dplyr::filter(Grupo=="6025, Un trimestre, TUS(1)")%>% dplyr::mutate(Variable =gsub("_", " ", Variable)) %>%ggplot(aes(x = Variable, y = Grupo, fill = Asociación)) +geom_tile(color ="white", size =0.8) +scale_fill_manual(values =c("+"="#556B2F", "-"="#E2725B", "\n"="white")) +labs(title =NULL, x ="Variables", y ="Conglomerado") +theme_minimal() +theme(#axis.text.x = element_text(angle = 45, hjust = 1),panel.grid =element_blank())+theme(axis.text.y =element_text(size =17, face ="bold"),#,margin = margin(l = 7)), # Tamaño de las etiquetas de los grupos étnicosaxis.text.x =element_text(size =17, face ="bold"), # Tamaño de las etiquetas del eje Xaxis.title.x =element_text(size =16, face ="bold"),#,margin = margin(t = -15)), # Tamaño del título del eje Xaxis.title.y =element_text(size =16, face ="bold"), # Tamaño del título del eje Yplot.title =NULL, # Tamaño y estilo del título del gráficolegend.title =element_text(size =17, face ="bold"), # Tamaño del título de la leyendalegend.spacing.y =unit(1.5, "lines"),legend.box.spacing =unit(0.5, "lines"), # Controla el espacio entre la leyenda y el gráficolegend.margin =margin(5, 5, 5, 5), legend.key.height =unit(1, "cm"), legend.text =element_text(size =15, face ="bold") # Tamaño del texto de la leyenda ) +coord_flip()ggsave("_figs/asociaciones_pam_om2_m.png", width=8.8*.8, height=5*.8, dpi=1000)
